293來源病毒包裝細胞；ΦA操作步驟：
1）貼壁細胞傳代：提前將培養(yǎng)基、PBS放入37℃水浴鍋內(nèi)預熱，用75%酒精擦拭后再放入超凈臺內(nèi)，吸除或倒掉細胞瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液，加少量PBS潤洗細胞，加入適量胰酶，使胰酶的量能蓋住細胞，37℃孵育，每隔2~3min顯微鏡下觀察，待貼壁細胞間間隙變大、細胞趨于圓形但還未漂起時棄去胰酶，加入新鮮培養(yǎng)基，晃動細胞瓶，終止胰酶作用，用吸管小心吹打貼壁的細胞，制成細胞懸液?？刂拼荡虻牧Χ龋苊猱a(chǎn)生大量的氣泡，將細胞懸液分別接種到另外的2~3個細胞瓶內(nèi)，加入新鮮培養(yǎng)基，置37℃溫箱培養(yǎng)，隔天觀察貼壁生長情況。

2）懸浮細胞傳代：將細胞懸液轉(zhuǎn)移到無菌離心管內(nèi)，1000rpm離心5min，棄去上清，加入新鮮的培養(yǎng)基，用吸管小心吹散沉淀，制成細胞懸液，將細胞懸液分別接種到另外的2~3個細胞瓶內(nèi)，加入新鮮培養(yǎng)基，置37℃溫箱培養(yǎng)。

3）病毒包裝準備：待細胞生長至適宜密度（通常約為70%-80%匯合），進行病毒包裝前的預處理。移除細胞瓶中的培養(yǎng)基，用PBS輕柔洗滌細胞兩次，以去除殘留的培養(yǎng)基成分和死細胞。根據(jù)所使用的病毒包裝系統(tǒng)（如慢病毒、腺相關病毒等），配制好相應的包裝質(zhì)粒和輔助質(zhì)?；旌衔?，以及轉(zhuǎn)染試劑。確保所有操作均在無菌條件下進行，避免污染。

4）病毒轉(zhuǎn)染：將包裝質(zhì)?；旌衔锱c轉(zhuǎn)染試劑按預定比例混合，輕輕顛倒混勻后，室溫靜置一段時間（如15-20分鐘），以形成轉(zhuǎn)染復合物。隨后，將此復合物逐滴加入到細胞瓶中，輕輕搖晃細胞瓶以確保均勻分布。將細胞瓶放回37℃溫箱，繼續(xù)培養(yǎng)。

5）病毒收集與純化：轉(zhuǎn)染后48-72小時，根據(jù)細胞狀態(tài)和病毒產(chǎn)生情況，收集細胞上清液。利用超速離心、病毒純化柱或親和層析等方法，對病毒顆粒進行純化，以提高病毒滴度和去除雜質(zhì)。純化后的病毒可儲存于-80℃冰箱，供后續(xù)實驗使用。在整個操作過程中，需嚴格遵循生物安全規(guī)范，防止病毒泄露和交叉感染。